甘薯无病毒苗的组培快繁

甘薯属无性繁殖作物,甘薯田间繁殖很易感染病毒,造成产量和品质大幅度下降。椐报道脱毒三代与未脱毒的产量差异不显著。而且脱毒薯在田间应用年限越长,单株薯重越轻。通过组培快繁不但提高繁殖系数,而且避免了病毒的感染,保持品种种性。岳薯1号、梅营1号淀粉含量均达20%以上,产量超过45000kg/hm2;紫薯80是一个深受欢迎的、有广阔市场前景的紫色品种。组培快繁对这3个无毒甘薯品种生产具有重要意义。1　材料与方法于4～6月份采集岳薯一号、梅营一号、紫薯80无毒甘薯苗茎尖,用自来水冲洗0.5～1.0h。置于超净工作台上用无菌滤纸吸干水分后,…     

草莓根尖脱毒组培及无病毒苗繁育技术研究

针对传统的草莓茎尖脱毒组培技术所存在的操作繁琐、效率低、消毒难彻底、组培苗污染率高等问题,课题组根据多年试验研究成果,提出了一种操作简便、效率高、消毒易彻底、组培苗污染率低、繁殖速度快,苗质好的草莓根尖脱病毒组培及其病毒快速检测技术,摸索出一套草莓根尖脱病毒组培快繁及规模化生产技术。     

甘薯脱毒苗的离体快繁研究

研究了基本培养基和两种激素单独使用对甘薯脱毒种苗生长的影响。结果表明:MS培养基是甘薯脱毒种苗生长的最佳培养基。激素NAA比6-BA能更有效促进生长,其最佳质量浓度为0.5～1.0mg/L,而6-BA更有利于促进根、芽的快速生长,其最佳质量浓度在1.0mg/L以下,超过2.0mg/L则严重抑制根的分化与生长。     

太子参组培快繁技术研究初报

太子参(Radix Pseudostellariae)属石竹科,以块根入药,富含皂甙、果糖、淀粉、精氨酸等,具有益气、补肺健脾、生津养胃功效.闽东地区是我国太子参的主产区,种植面积和产量占全国总产量的2/3以上,并出口日本、美国、加拿大等国,具有广阔的市场潜力.     

甘薯脱毒苗的快繁技术

甘薯脱毒苗是目前利用茎尖培养防治植株病毒病最有效方法.我公司脱毒中心在2000年脱毒薯田间对比试验中,用甘薯茎尖培养并获得的植株增产16%～17.9%.脱毒甘薯苗对农业生产带来巨大经济效益和社会效益.其快繁技术要点如下:     

甘薯新品种万薯7号组培快繁技术研究

[目的]探索甘薯新品种万薯7号组培快繁技术。[方法]剪取万薯7号0．5～1．0cm长的单叶节段,接种到不同激素处理的MS固体培养基,在温度（27±1）℃,光周期16h／d,光强1500～2000lx条件下培养30d。[结果]添加生长素IAA或NAA对薯苗生长起促进作用,而细胞分裂素6-BA抑制生长,0．01-0．80mg／L的IAA或NAA与1．00mg／L的6．BA配合使用均抑制万薯7号组培苗生长。[结论]添加0．05mg／L的IAA或0．20mg／L的NAA的MS培养基,能显著增加万薯7号培养苗的叶片数和苗高,增殖系数达5倍以上,适用于万薯7号组培快繁。     

平薯3号脱毒苗组培快繁技术研究

研究了基本培养基和植物生长调节剂对平薯3号脱毒苗生长的影响,结果表明:MS培养基是平薯3号脱毒苗生长的最佳培养基。激素NAA能有效促进生长,其最佳质量浓度为0.5-1.0 mg/l,而6-BA更有利于根和芽的快速生长,其最佳质量浓度为0.1-1.0 mg/l。     

甘薯脱毒和组培快繁技术研究初探

为建立甘薯有效的脱毒和快繁技术体系,本研究主要探索适宜甘薯快速繁殖的培养基,并针对茎尖培养、高温处理及药剂处理3种方法对甘薯病毒的脱除技术进行研究.结果表明,烟薯25茎尖培养脱毒试验中7种病毒脱除率为28.6％,京6脱毒率为0.烟薯25在40℃条件下分别处理2 h或8 h,可有效脱除甘薯羽状斑驳病毒(SPFMV)及甘薯...     

甘薯茎尖脱毒及组培快繁技术

[目的]研究甘薯茎尖分生组织的分化培养基配方及快繁培养的影响因素。[方法]以甘薯茎尖作为外植体,总结出茎尖分化培养前的灭菌方法,筛选出适宜的分化培养基配方、快繁培养基配方以及影响快繁的各因素。[结果]75%的乙醇30 s+0.1%升汞10 min能取得较好的灭菌效果,降低污染率;适宜的茎尖分化培养基配方为:MS+0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.25 mg/L GA3+10 mg/L病毒唑;快繁培养基配方为:Ms+0.1~0.2 mg/L NAA+2 mg/L泛酸钙;适宜的糖用量为30 g/L;培养条件为温度28℃、光照强度2 000lx、光照时间16 h/d时脱毒苗茎段生根较快,侧芽萌发后节间适中,有利于提高繁殖系数。[结论]为脱毒苗工厂化生产提供技术支持。     

黄姜花组培快繁技术

以黄姜花的笋芽为外植体,研究了外植体的消毒、丛生芽的增殖及生根培养等关键步骤的配方。结果表明:1)利用ρ=1g·L-1的升汞对外植体进行消毒的最佳时间为12min;2)黄姜花丛生芽增殖的较优配方为:3/4MS+6-BA3.5mg·L-1+水解酪蛋白1000mg·L-1+蔗糖30g·L-1,继代周期25d,增殖倍数为5.83;3)1/2MS+NAA0.5mg·L-1的生根培养基效果最好,平均生根数达9.17条,平均根长2.73㎝,植株健壮;4)将试管苗移裁在V河砂︰V表土=1︰1的基质中,25d后成活率可达91.67%,植株生长良好。     

川贝母组培快繁实用技术

本文介绍了川贝母组培快繁实用技术,包括外植体的选择、无菌体系的建立、培养基和激素的选择、培养条件等内容,以期为川贝母的组培快繁提供技术参考。     

甘薯脱毒苗组培扩繁基本培养基配方的探究与优化

甘薯在种植过程中因连年种植出现的病害发生加重、产量降低、品质变劣等因素严重制约了甘薯产业的发展。甘薯脱毒技术是脱除病毒、恢复品种种性、提高甘薯产量和品质的有效途径,但生产中脱毒苗的供应能力不足,为了探索其解决办法,以徐薯18、龙薯9号为试验材料,根据甘薯龙薯9号扦插苗自身吸收矿质元素的量计算所得的基质培配方龙9以及1/2龙9、MS、1/2MS为处理,进行了脱毒苗组培扩繁的比较探究。结果表明,徐薯18和龙薯9号1/2龙9配方的茎节数和茎长均为最好,但试验过程中该配方出现了叶片黄化现象,故对1/2龙9配方进行了完善,并在徐薯18、龙薯9号、烟薯25、绵薯10号、遂宁524及北京1号6个甘薯品种进行了验证,结果表明1/2改良龙9配方处理下的各品种茎长和茎节数均优于MS配方,这对于解决生产中脱毒苗供应不足的问题以及经济效益的增加有极其重要的作用。     

豆梨试管苗组培快繁影响因素研究

以豆梨试管苗为试验材料,采用L16(54)正交设计方案,研究6 - BA、NAA、蔗糖、琼脂、活性炭对豆梨组培快繁技术的影响.结果表明:6 - BA对豆梨增殖系数起主导作用,同时对试管苗玻璃化起促进作用.活性炭对增殖系数、玻璃化率及苗高均起抑制作用,NAA则对试管苗苗高起一定的主导作用.     

脱毒甘薯试管苗三角瓶内外快繁的研究

以脱毒甘薯豫薯8号试管苗为试材，对三角瓶内外的快繁进行了研究。结果表明：三角瓶外快繁不仅能降低成本，省时省工，而且在苗的质量上也优于三角瓶内快繁，移栽到大棚后，适应快，长势好，成活率高。     

山苍子组培快繁关键技术研究

试验研究了山苍子带芽茎段外植体褐变抑制方法,筛选山苍子丛芽增殖、生根的最佳培养配方.实验结果显示,山苍子外植体经4℃低温预处理12h、以脱脂棉为载体的固液培养基类型、诱导培养基中添加1mg/l的褐变抑制剂PVP均能有效抑制外植体褐变;最佳丛芽增殖培养基为MS+1 mg/1 6-BA+0.3 mg/lIBA,月增殖系数4.8;最佳生根培养配方为MS +0.5 mg/l IBA,生根率达97％以上.     

月季组培快繁技术研究进展

为降低月季生产成本,提高生产速度与产品质量,促进研究与生产相结合。本文介绍了月季组培快繁技术的研究概况,着重阐述了外植体选择与消毒、培养基和激素及移栽基质的选择、月季无菌播种、褐变与玻璃化产生原因及预防等内容,并对月季组培快繁技术的研究与开发进行了初步探讨。     

银柴胡组培快繁研究进展

通过对近年来银柴胡组培快繁研究进展的综述,总结当前银柴胡组培快繁存在的组培途径单一、药材品质不详、遗传稳定性未知等问题及其解决思路,以期促进人工栽培银柴胡产业可持续、高质量、规模化的发展,为银柴胡种质资源的保护提供参考。     

紫色甘薯试管苗稳定高效快繁技术研究

对紫色甘薯试管苗进行快繁试验,研究了消毒处理、植物激素6-BA、蔗糖浓度及扦插条件对试管苗进快繁体系的影响。结果表明,MS+6-BA(1.5 mg/L)+IAA(0.2 mg/L)+蔗糖(30 g/L)为最适宜的快繁培养基,试管苗移栽扦插后,获得紫色甘薯薯块,建立了一套完整的紫色甘薯快繁体系,开发了一种稳定、高效的紫色甘薯试管苗快繁技术。     

地被菊组培快繁技术

以选用优良无毒地被菊顶芽及侧芽为外植体,探讨了组培快繁途径,确定以MS+6-BA2.0 mg/L+NAA 0.02 mg/L为初代培养基,培养40天;以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.01 mg/L为继代培养基,培养30天;以1/2MS+0.5 mg/L IBA为生根培养基,培养30天;炼苗3天后移栽成活率在98%以上,能在短时间内繁殖出大量优质种苗,且观赏价值及长势均优于同期温室扦插苗。可大量用于园林应用。     

东方百合组培快繁试验

采用东方百合Tiber品种的多种外植体分别进行了组培试验,结果表明,Tiber百合各外植体形成愈伤组织的能力有差异,其能力大小依次为:小鳞茎>花托>鳞片>叶柄>叶片;Tiber百合最佳诱导分化培养基为MS+2,4-D 1.0 mg/L+6-BA 0.5 mg/L,继代最佳培养基为MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 0.1mg/L,生根培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L。