生菜基因转化组织培养受体系统的建立

以散叶生菜大速生（Lactuca sativa var. capatata L.）为试材,以MS为基本培养基,采用不同的激素配比,经愈伤组织诱导、芽分化、生根、移植入土四个步骤的离体培养,获得正常的再生植株,建立了散叶生菜大速生的基因转化受体系统,为下一步的基因转化工作提供了有利条件。高效诱导愈伤组织培养基为MS 0.5 mg/L 6-BA 0.1 mg/L NAA,高效诱芽培养基为MS 0.1 mg/L 6-BA 0.05 mg/L NAA。同时确定了子叶外植体对抗生素的敏感性。试验表明,筛选培养基中适宜的卡那霉素选择压在100 mg/L以下,抑菌剂羧苄青霉素或头孢噻肟钠的适宜质量浓度均为300 mg/L。     

生菜遗传转化受体系统的建立及鲑鱼降钙素基因的导入

以散叶生菜大速生(Lactuca sativa var.capatata L.)为试材，以MS为基本培养基。采用不同激素配比，确定生菜高效诱芽培养基为MS 0．1 mg／L6-BA 0．05mg／LNAA；抗生素敏感性试验表明，筛选培养基中适宜的卡那霉素选择压为75mg／L，抑菌剂羧苄青霉素的适宜质量浓度为300mg／L；通过根癌农杆菌介导的叶盘法将鲑鱼降钙素(sCT)基因转入大速生散叶生菜，PCR检测转化率达25．4％。     

百合基因转化受体系统的建立

以百合叶片为外植体不经愈伤组织直接诱导并且发育成带球径的大苗进行了研究,结果表明：叶片分芽培养基为ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＺＴ０．。１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ生根培养基为１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．。２－１．０ｍｇ／Ｌ,成球并且生长培养基为ＭＳ＋ＩＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ,移栽成活率为１００％《     

百合基因转化受体系统的建立

以百合叶片为外植体不经愈伤组织直接诱导并且发育成带球径的大苗进行了研究，结果表明：叶片分芽培养基为ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＺＴ０．１ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ，生根培养基为１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．２～１．０ｍｇ／Ｌ，成球并且生长培养基为ＭＳ＋ＩＡＡ１．０ｍｇ／Ｌ，移栽成活率为１００％．从而建立了百合基因转化的受体系统     

密蒙花(Buddlija officinalis)基因转化受体系统的建立

以密蒙花(Buddlija officinalis Maxim)芽、叶、茎段为外植体，在B5，MS，White培养基上获得愈伤组织。结果表明：芽、幼叶脱分化能力差异不大；不同时期的叶片差异较大，以幼叶诱导为佳；作者筛选出的愈伤组织最佳培养基为B5 6-BA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L。在继代培养阶段，B5比MS和White更适合细胞的快速生长和繁殖；并且以叶片的愈伤组织生长较快，芽、茎段次之，最佳继代培养基为B5 6-BA0．5mg／L NAA0．5mg／L，继代的愈伤组织可在B5 6．BAlmg／L NAA0．1mg／L GA0．1mg／L培养基中分化出幼苗，在生根培养基1／2MS NAA0．2mg／L或1／2MS NAA0．6mg／L中分化出根且获得再生植株，将长4～6cm的再生小苗练苗3d后移植，幼苗成活率达100％，并于当年开花。     

绿叶宝对芹菜、西红柿和结球生菜的增产效果试验初报

“绿叶宝”是一种新型植物营养液，为了解它对蔬菜产量的影响，我们选芹菜、西红柿和结球生菜分别进行了田间试验，试验结果表明，喷施绿叶宝后，芹菜能增产17－33．4％，西红柿能增产23．9％，结球生菜能增产35．7％。并且蔬菜的抗病能力显著增强。     

中国水仙（Narcissus tazetta Var.chinensis）基因转化受体系统的建立

通过水仙组织培养已建立起2类基因转化受体系统,一类是适合于基因枪转化的愈伤组织再生系统,另一类是适合于农杆菌介导转化的外植体直接诱导生长系统,愈伤组织的诱导形成以培养基MS＋0．1－0．3mg/L2,4-D 0.2-0.5mg/LNAA为宜,外植体在培养基MS＋4mg/L KT 0.1mg/L NAA中直接诱导生长,可获得较高的成苗率。     

杉木遗传转化受体系统的建立

以杉木试管苗靠近茎尖的茎段为外植体,通过不同预培养时间及不同浓度6-BA、TDZ、头孢霉素、卡那霉素等处理,分析诸因素对茎段再生芽的影响,建立了以杉木茎段为外植体的高频再生系统。结果表明：DCR＋6-BA（1．0mg／L）＋TDZ（0．001mg／L）＋NAA（0．1mg／L）最适干杉木茎段诱导芽发生,预培养时间为2d时,芽诱导频率、平均芽数和芽形成能力最高。切片观察发现,茎段发生的芽多起源干茎段表面,是农杆菌容易抵达的位置,说明茎段附着农杆菌的细胞与再生芽的部位相一致。     

小白菜子叶离体培养再生系统的建立

对４个小白菜栽培品种的离体培养条件进行研究，结果表明：在含有ＢＡ２＋ＮＡＡ１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上，添加ＡｇＮＯ３４～６ｍｇ／Ｌ能显著提高所试小白菜品种不定芽的分化频率，ＡｇＮＯ３与ＡＢＡ配合使用不仅能提高其不定芽的分化率，而且还能抑制愈伤组织生长，本实验所建立的直接出芽程序的小白菜的遗传转化研究提供一个良好的再生体系。     

粉葛再生体系建立的研究

为建立高效粉葛组织培养再生体系,以不同消毒方式、基本培养基、蔗糖浓度、外植体等处理,研究其对粉葛初代培养、继代培养和生根培养的影响。结果表明,以75%酒精30 s+0.1%升汞+吐温-80消毒8 min时,外植体的成活率最高,可达83.33%。外植体的最佳取材部位为带芽茎段,其平均株高可达2.13 cm,繁殖系数为2。MS为最佳的基本培养基,繁殖系数为1.26;蔗糖浓度以30 g/L为最佳,其平均株高为1.69 cm,繁殖系数为1.55;最佳初代培养基为MS+琼脂5.5 g/L+蔗糖30 g/L+6-BA 0.2 mg/L+IBA 0.6 mg/L,其平均株高为3.13 cm,繁殖系数为3.17;最佳的继代培养基为MS+琼脂5.5 g/L+蔗糖30 g/L+6-BA 0.6 mg/L+IBA 0.8 mg/L+KT 0.2 mg/L,其平均株高为1.86 cm,繁殖系数为3.44;最佳的生根培养基为MS+琼脂5.5 g/L+蔗糖30 g/L+IBA 1.0 mg/L,其生根率为100%,平均主根数达7.1根。通过组培条件优化,初步建立粉葛的再生体系。     

香石竹茎段无性系的建立

以香石竹无菌茎段为外植体成功获得再生植株，并建立快速无性繁殖系，茎段愈伤组织的诱导及芽点的分化最佳培养基是1／2MS BA1 2，4mg／L-D0．4mg／L，芽增殖的最佳培养基是MS BA0．5mg/L NAA0．5mg／L，根诱导最佳培养基是1／2MS IAA0．2mg／L，最佳移栽基质是炉碳渣。     

一个简单高效的甘蓝转化系统的建立

将苗龄为５－７天的甘蓝子叶柄下胚轴分别培养于再生率很高的两个培养其中。当培养７－１０天时，通过基因枪轰击，进行ＧＵＳ基因的转移，结果表有，ＧＵＳ基因导入了甘蓝细胞并进行了瞬间表达。     

壳聚糖涂膜技术对MP莴苣保鲜效果的研究

研究了选用壳聚糖作为涂膜剂保鲜MP莴苣的效果 .在 ( 4± 0 .5 )℃低温下贮藏保鲜 ,测定莴苣的失重率、维生素C损失率、对多酚氧化酶 (PPO)活性的影响 .研究表明 1%壳聚糖 +0 .0 4%山梨酸钾制成的涂膜剂有良好的保鲜效果 ,可显著抑制莴苣贮藏过程中的失重及酶促褐变 .     

不同浓度甲醇对油麦菜光合作用和产量的影响

以2％，5％，10％，15％，20％等不同浓度的甲醇叶面喷施叶菜植物油麦菜，实验结果表明，2％甲醇处理对油麦菜叶片气孔开度有明显的促进作用；5％和10％甲醇处理对油麦菜有明显的增产作用。甲醇与其他光合促进剂有效配伍，可考虑作为一种良好的叶面肥或光合促进剂进行大田推广。     

MAP技术保鲜损伤生菜研究

采用各种预处理方法加强ＭＡＰ（ＭｏｄｉｆｉｅｄＡｔｍｏｓｐｈｅｒｅＰａｃｋａｇｉｎｇ）技术保鲜损伤生菜的效果;具体研究了紫外线、Ｈ２Ｏ２、ＮａＣｌＯ、乙醇、５３℃热水等预处理方法与ＭＡＰ协同对损伤生菜贮藏品质和微生物的影响。结果表明,经Ｈ２Ｏ２（０．１５ｍｌ／Ｌ,１ｍｉｎ）处理后ＭＡＰ（Ｏ２：１．５～２．０％,ＣＯ２：２．０～２．５％）４～５℃贮藏效果最佳。另外,低温、Ｈ２Ｏ２、ＭＡＰ对微生物有较好的抑制作用     

城镇土地信息系统的组织和建立

随着电子技术的发展和经济建设的需要，在我国一些发达城镇已建成或正在组建自动化多用途房地产地籍系统，并向土地信息系统方向发展。本文借鉴国外的有关先进经验，在自动化房地产地籍基础上着重讨论了组建“城镇土地信息系统”的一些基本理论和方法。     

深化农业科技体制改革，加快建设国家新型农业科技创新体系

本文分析了经过20年改革以后我国农业科技存在的新闻题，进入新阶段发展现代农业、致富农民、繁荣农村经济、农产品国际竞争对农业科技的新需求，百年来国际上建设国家农业科技创新体系的历程、经验和做法，提出了我国加快建设新型国家农业科技创新体系的思路与政策建议。     

罗汉果ISSR-PCR反应体系的建立

以罗汉果 ( Siraitia grosvenorii) DNA为材料 ,分析了模板 DNA,Mg2 + ,d NTPs,引物的浓度 ,Taq DNA聚合酶的用量以及循环次数对 ISSR-PCR扩增结果的影响 ,确立了稳定的、可重复的罗汉果 ISSR最佳反应体系和 PCR扩增参数 :在 2 5μL的 PCR反应体系中 ,含 2 0～ 5 0 ng模板 DNA,1 U Taq酶 ,1× PCR缓冲液 ,2 .0 mmol/L Mg Cl2 ,4种 d NTPs各 2 0 0 μmol/L,0 .5 μmol/L引物 ;PCR扩增程序为 94°C预变性 3 min,接着进行 40个循环 :94°C变性 1 min,5 2°C退火 5 0 s,72°C延伸 2 min,循环结束后 72°C延伸 7min.