Rituximab的碘标记方法及其在正常小鼠体内的生物分布

采用N-溴代琥珀酰亚胺(NBS)方法对Rituximab(美罗华)进行标记,并优化标记条件。系统考察了反应时间、NBS用量、反应温度、反应体积、pH值及KI的加入等条件对125I-Rituximab标记率的影响,用ITLC-SG测定标记率和放化纯度。确定最佳条件为:反应时间2～3 min、pH 7.0、室温、反应体积80μL为反应最优条件。在最佳条件下,5次标记实验标记物的放化纯度为93.9%±1.6%。采用体外结合实验测定储存不同时间131I-Rituximab的免疫活性,结果表明随着131I-Rituximab储存时间的增加免疫活性下降。正常小鼠静脉注射131I-Rituximab后体内分布显示血液中放射性分布较高,并可持续6 d,表明131I-Rituximab体内稳定。异常毒性实验结果表明131I-Rituximab毒性低。     

碘标记毒死蜱及其在小鼠体内的生物分布

为探讨¹³¹I标记毒死蜱（Chlorpyrifos, CPF）在小鼠体内的分布特点,采用Iodogen法对CPF进行¹³¹I标记,KM小鼠尾静脉注射¹³¹I-CPF（185 kBq/只,n=5）,分别于注射后5、10、30、60、120、240、1440 min取各脏器,计算每克组织摄取注射剂量的百分率（%ID/g）。结果显示,¹³¹I-CPF标记率达93.5%,放化纯度为96.9%,¹³¹I-CPF在小鼠体内广泛分布,主要经肺、胃、小肠、大肠、肌肉和颌下腺吸收,其放射性摄取率在注药后 10 min 时达高峰,分别为37.12%ID/g、6.18%ID/g、8.12%ID/g、8.15%ID/g、7.04%ID/g和7.02%ID/g;经肝和肾进行代谢,其放射性摄取率在5 min时分别为4.34%ID/g和8.50%ID/g, 4 h为0.22%ID/g和 0.69%ID/g。血液中放射性清除较快,放射性摄取率在注入后5 min时为37.27%ID/g,4 h为1.35%ID/g。碘标记CPF体外稳定,体内主要经肺和消化道吸收,肝、肾代谢,可用于进一步的微量示踪研究。     

^125I标记的亲和素及其衍生物在小鼠体内的生物分布

为了降低鸟亲和素的高肝摄取，延长Ａｖ在血液中的滞留时间，对Ａｖ进行化学修饰，修饰后的Ａｖ衍生物用＾１２５Ｉ标记示踪，观察小鼠体内生物分布。结果表明，Ａｖ衍生物＾１２５Ｉ－ｓｕｃ－Ａｖ减少肝、肾、脾中摄取最佳；衍生物＾和２５Ｉ－ｏｃｔｏ－Ａｖ在肾中摄取较链霉亲和素低，而在有趣中仍有较高放射性浓集；衍生物＾１２５Ｉ－ｏｃｔｏ－Ａｖ－ｓｕｃ的肾摄虽较高，但代谢较＾１２５Ｉ－ＳＡ快，然而肝摄取没有明显降低     

新型肺癌小分子多肽的~(131)I标记及其在小鼠体内的生物分布

建立肺癌特异性靶向小分子多肽cNGQGEQc的~(131)I标记方法,研究~(131)I-cNGQGEQc在正常小鼠体内的生物学分布特性。采用氯胺-T法对N端连接有酪氨酸的cNGQGEQc进行~(131)I标记,测定~(131)IcNGQGEQc的标记率、放化纯度、脂水分配系数及在生理盐水(NS)和正常人血清中的体外稳定性,并对标记物在正常小鼠体内的分布进行了初步研究。结果表明,~(131)I-cNGQGEQc的标记率大于90%,比活度为0.4TBq/g;~(131)I-cNGQGEQc在正常人血清和NS中较稳定;~(131)I-cNGQGEQc的脂水分配系数lgP为—1.68,体内生物分布结果表明,肾脏的放射性摄取率在1 h和12 h分别为(10.59±4.66)%ID/g和(1.79±0.89)%ID/g,肾脏的放射性摄取明显高于其他脏器,表明~(131)I-cNGQGEQc主要经肾脏代谢。以上结果表明,~(131)IcNGQGEQc的标记率较高,在体外具有良好的稳定性。~(131)I-cNGQGEQc为水溶性,可用于进一步的靶向诊断与治疗的研究。     

脑活肽的^125I标记及其在动物体内的生物分布

采用氯胺在Ｔ法进行脑活肽的＾１２５标记，标率为（３２．５±５．０）％（ｎ＝３）标记产物比活度为１．９８ＴＢｑ／ｇ２０％三氯乙酸沉淀法测定＾１２５Ｉ－脑活肽放化纯度〉９０％，１周内其放化纯度下降〈５％，＾１２５Ｉ标记脑活肽大白鼠体内生物分布结果表明，脑活肽能够通过血脑屏障，且在脑组织的停留时间相对比其他组织长，说明脑组织具有一定的摄取＾１２５Ｉ－脑活肽的功能。     

~(67)Ga-EDTMP标记条件的研究及其在小鼠体内的生物分布

用加速器生产的∧67Ga制备了∧67Ga-EDTMP（乙二胺四甲撑膦酸）,研究了配位体用量、反应时间、反应温度和pH对标记率的影响,测定了标记物的体外稳定性及其在小鼠体内的生物分布。结果表明,标记率可达97%以上;∧67Ga-EDTMP有较高的骨吸收和T/NT值,并在72h内保持很高的水平。     

Lanreotide的188Re标记及其生物分布

以氯化亚锡为还原剂，酒石酸钠为转换络合剂，用188Re直接标记了Lanreotide；并观察了标记物在动物体内的分布，结果表明，标记反应的最佳条件是：10μg Lagreotide,1.5mg酒石酸钠，1．0mg氯化亚锡和100μL（74MBq)^188ReO4^-溶液，调反应液pH2-3.60℃下反应40min，标记率为88％－94％，标记物经Sep-Pak C18柱纯化，放化纯度大于95％；标记物的体外稳定性较差，但加入一定量的Vc可以提高其稳定性；动物实验表明，^188Re-lanreotide在肠和肺中的摄取量较高，血液清除速度较快，并经肝脏代谢。     

Annexin V的125I标记及其在正常小鼠体内的分布

采用Iodogen法对Annexin V进行了^125I标记,并观察了其在正常小鼠体内的分布情况.标记结果显示,^125I-Annexin V 标记率达94.9%,纯化后放化纯度达99%;室温放置72 h后,放化纯度仍保持在92%以上,表明其体外稳定性较好.生物分布结果显示,^125I-Annexin V在肾脏中放射活性最高,其次为血液、肝脏、心、肺、脾;脑不吸收^125I-Annexin V;肌肉、骨骼组织摄取亦较少;各组织、器官放射性摄取在1 h内除血液下降稍慢外,其余均有明显下降.表明^125I-Annexin V 适合用作核医学诊断试剂.     

Annexin V的~(125)I标记及其在正常小鼠体内的分布

采用Iodogen法对Annexin V进行了125I标记,并观察了其在正常小鼠体内的分布情况。标记结果显示,125I-Annexin V标记率达94.9%,纯化后放化纯度达99%;室温放置72 h后,放化纯度仍保持在92%以上,表明其体外稳定性较好。生物分布结果显示,125I-Annexin V在肾脏中放射活性最高,其次为血液、肝脏、心、肺、脾;脑不吸收125I-Annexin V;肌肉、骨骼组织摄取亦较少;各组织、器官放射性摄取在1 h内除血液下降稍慢外,其余均有明显下降。表明125I-Annexin V适合用作核医学诊断试剂。     

Tyr^3—octreotide的^131I标记条件研究及其在小鼠体内的生物分布

进行了＾１３１Ｉ标记Ｔｙｒ＾３－ｏｃｔｒｅｏｔｉｄｅ最佳标记条件的研究，包括反应量，反应时间，反应体积等对标记率的影响，ＨＰＬＣ分析最高标记率可达８２％，用ＳＥＰ－ＰＡＫ柱处理后，ＨＰＬＣ分析放化纯度〉９９％，对纯化后标记物在小鼠人的生物分布也进行了研究，结果表明，血液清除快，标记物通过标胆排泄，标记物在肿瘤内有一定浓聚，在注入后３ｈ内显像效果较好。     

Radioiodine-Labeling of Chlorpyrifos and Its Biodistribution in Mice

To investigate the preparation of radioiodinated Chlorpyrifos and its biodistribution in mice, Chlorpyrifos was labeled with¹³¹I using the Iodogen method. Biodistribution studies were carried out in KM mice. At different times after radiopharmaceutical i.v. administration (185 kBq¹³¹I-Chlorpyrifos/mouse, n=5), the animals were sacrificed. Blood samples and the tissues of interested were collected, weighted and counted. The percentage of injected does per gram (%ID/g) was calculated for each sample. The labeling yield of ¹³¹I-Chlorpyrifos was 93.5%, The radiochemical purity (RCP) was 96.9%. Biodistribution in mice demonstrated that¹³¹I-Chlorpyrifos was extensive, and the uptakes mainly occur in lung, stomach, small-intestine, colon, musle, and submaxillay gland, as indicated by their amount of 37.12%ID/g, 6.18%ID/g, 8.12%ID/g, 8.15%ID/g, 7.04%ID/g, and 7.02%ID/g at 10 min, respectively. And it was metabolized in liver and kidney, as indicated by their uptake of 4.34%ID/g and 8.50%ID/g at 5 min, and 0.22%ID/g and 0.69%ID/g at 4 h, respectively. In addition,¹³¹I-Chlorpyrifos was cleared out from blood quickly, and the uptake of¹³¹I-Chlorpyrifos in blood was 37.27%ID/g at 5 min, and decreased to 1.35%ID/g at 4 h post injection. In conclusion, ¹³¹I-Chlorpyrifos was stable in vitro and it was absorbed in lung and digestive tract, and it was metabolized mainly in liver and kidney, worthy of further investigation to trace the compound in vivo and in vitro.     

碘标白藜芦醇及其小鼠体内分布

通过碘¹³¹标记白藜芦醇探讨白藜芦醇在小鼠体内的分布代谢。采用过氧化物酶法对白藜芦醇进行¹³¹I标记;经乙酸乙酯萃取纯化,以聚酰胺薄膜为支持介质,V(三氯甲烷)∶V(丙酮)∶V(乙醇)∶V(水)=4∶4∶0.5∶0.4为展开剂,测定标记物的标记率和放化纯;KM小鼠尾静脉注射¹³¹I白藜芦醇（每只0.185MBq,n=5）。¹³¹I白藜芦醇标记率达69.3%,萃取分离后其放化纯为959%,3、7和15d后分别为92.0%、90.4%、90.1%;动物实验显示,¹³¹I白藜芦醇在小鼠体内广泛分布,主要经肝和肾进行代谢,5min时每克组织百分注射剂量率(%ID•g^-1)分别为16.35、13.05,在肠中也有较高分布,10min时%ID•g^-1为11.70;甲状腺的摄取率随时间的延长而增加。碘标白藜芦醇标记物较稳定,可用于进一步的微量示踪研究。     

Radioiodine-labeling of EGCG and Its Biodistribution in Mice

To establish the ¹²⁵I-EGCGlabeling method and investigate the biodistribution of ¹²⁵I-EGCG inmice, ¹²⁵I-EGCG was prepared by Iodogen solid labeling method, andwere isolated and purified by Sephadex-G25 agarose, The labeling yield andradiochemical purity of ¹²⁵I-EGCG was analyzed by polymide TLC. Thelabeling yield of ¹²⁵I-EGCG was 89.4% and its radiochemicalpurity(RCP) were 96.4%. The Biodistribution of ¹²⁵I-EGCG in mice wasmeasured at different times after caudal vein injection with 185 kBq for eachmice. The biodistribution in mice demonstrated that ¹²⁵I-EGCG wasdistributed into broad organs and tissuuues, especially in the Stomach, Smallintestine and Submaxillay gland, and the biggest uptake of ¹²⁵I-EGCGin there organs was 15.92、5.83and 11.56 %ID·g^-1respectively at 15 min post injection. In addition, ¹²⁵I-EGCG wascleared out from blood guickly, and theuptake of ¹³¹I-EGCG in blood was 11.95 at 5 min, anddecreased to 1.25 at 4 h post injection. Therefore, ¹²⁵I-EGCG wasstable and it was metabolized mainly in Stomach, Small intestine, Submaxillaygland, worthy of further investigation to trace the compound in vivo and invitro.     

~(125)I-OxLDL-Ab在正常小鼠及动脉粥样硬化动物模型体内的生物分布

分别采用高效液相色谱法、紫外分光光度法对OxLDL-Ab进行定性、定量分析,评价~(125)I-OxLDL-Ab在正常动物和动脉粥样硬化模型动物的体内分布。正常动物采用昆明小鼠,模型采用载脂蛋白E基因敲除的小鼠(apolipoprotein E-deficient mice,ApoE~(-/-))。高效液相色谱条件为:磷酸缓冲液(PB,0.2 mol/L,pH=7.4)为流动相,流速1.0mL/min,检测波长220nm;紫外分光光度法测得蛋白浓度的标准曲线为:y=0.664 5x-0.008 3,r2=0.999 7。~(125)I-OxLDL-Ab在正常小鼠体内分布实验结果表明:除甲状腺外,各器官的放射性摄取随时间延长而减少,无明显浓集;在注射~(125)I-OxLDL-Ab后1d各器官代谢消除超过2/3,7d后血液中完全清除。~(125)I-OxLDL-Ab在ApoE~(-/-)鼠体内的分布实验中采用w=2%的KI溶液封闭了甲状腺,消除了甲状腺高摄取的影响;靶器官肺有较高放射性摄取,且在注射后4~8h显示出放射性浓集;除血外,其它各器官的靶器官/非靶器官的放射性摄取比值(T/NT)均大于1,其中T/Mu(肌肉)8,显示出~(125)I-OxLDL-Ab对靶器官有一定的选择性。标记抗体的体内靶向性是显像研究中至关重要的一环,要进一步用于动脉粥样硬化早期显像诊断,还需进一步提高靶器官/非靶器官的放射性摄取比值,提高其在体内与其抗原的亲和性。     

177Lu标记单克隆抗体Rituximab

以CHX-A''''-DTPA和p-SCN-Bz-DTPA为双功能螯合剂,分别对Rituximab进行偶联,用¹⁷⁷Lu进行标记,制备¹⁷⁷Lu-Rituximab。在优化条件下,¹⁷⁷Lu对单抗偶联物CHX-A''''-DTPA-Rituximab和p-SCN-Bz-DTPA-Rituximab的标记率和放化纯度均大于99%。室温及37 ℃条件下,¹⁷⁷Lu-Rituximab在各种测试体系中均显示良好的体外稳定性。在正常小鼠体内的生物分布结果显示,¹⁷⁷Lu-Rituximab发生了分解,游离的¹⁷⁷Lu在骨中形成较高浓集。¹⁷⁷Lu-p-SCN-Bz-DTPA-Rituximab比¹⁷⁷Lu-CHX-A''''-DTPA-Rituximab的体内清除快,而且游离¹⁷⁷Lu的骨摄取低,结果表明,p-SCN-Bz-DTPA更适于作为双功能螯合剂用于单抗的¹⁷⁷Lu 标记。     

99TcmN-HL91的制备及其生物分布

以丁二酰二酰肼(SDH)为N3-离子供给体,SnCl2·2H2O为还原剂,室温下制备[99TcmN]2+中间体,并于100 ℃水浴中与HL91配体进行交换反应,制得99TcmN-HL91配合物,标记率大于90%;室温下放置6 h,99TcmN-HL91标记率仍大于90%;其脂水分配系数lg P为-1.026±0.019,水溶性较99Tcm-HL91(lg P为-0.859±0.009)强;正常小鼠体内生物分布显示,99TcmN-HL91在血液、肝脏中的清除较99Tcm-HL91快;由于99TcmN核的引入,使得99TcmN-HL91配合物在乏氧选择性和生物体内代谢方面不同于99Tcm-HL91,前者在荷瘤小鼠体内没有明显的肿瘤摄取.