线艺兰的组织培养及植株再生研究

采用线艺兰建兰茎尖、腋芽为外植体,通过对类原球莘的诱导、增殖、分化、生根和移植等影响因素研究,运用正交试验筛选出最佳的根状茎增殖培养基为B5+6-BA 0.5mG/L+NAA 1.0 mg/L+蔗糖20g/L,根状茎最高增殖倍数达13.5%;最适宜的分化培养基为B5+6-BA 2.0mg/L +NAA 0.2mg/L+AgNO₃ 5mg/L+蔗糖30g/L,其芽分化率最高为44.1%.最佳乍根培养基为1/2B5+NAA0.2mg/L+AC 0.5g/L+蔗糖30g/L.NAA对线艺兰根状茎的增殖影响最大.6-BA则对根状茎的分化成芽起显著性影响,其次是AgNO₃,而NAA影响不大.     

中透艺春兰根状茎的组培快繁及艺向培养研究

以中透艺春兰根状茎为材料,研究培养基和外源激素对根状茎增殖、分化的影响,同时探讨光照及不同根状茎材料对艺向稳定的影响。结果表明:3/4MS培养最适宜根状茎的增殖;TDZ 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L和6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L的组合对根状茎的增殖效果较好;6-BA 1.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L的组合最有利于根状茎的分化,芽分化率达到97.7%。2 000 lx的光照强度最有利于中透艺春兰的根状茎的出苗率和出艺率;选取整条为淡黄色的根状茎作为材料,能较好地保证叶艺的走向。     

春兰杂交种子非共生萌发和快速繁殖

春兰杂交种子非共生萌发即无菌播种诱导根状茎试验表明:培养基为MS+BA 0.1 mg/L+NAA0.1 mg/L+LH 5g/L+AC 1g/L时,其萌发率达到66.67%,添加水解乳蛋白可明显提高种子发芽率并促进根状茎生长,果龄8～9个月的蒴果播种萌发率较为理想;根状茎增殖分化培养基为WPM+6-BA 1.0 mg/...     

野生贵州地宝兰无菌播种及根状茎繁育技术研究

[目的]研究以贵州地宝兰种子为外植体进行无菌播种快繁技术体系,筛选出各个阶段较优的培养基,以提高繁育系数。[方法]以贵州地宝兰种子为外植体,通过无菌播种获得大量根状茎,经过根状茎增殖培养、诱导芽分化、生根壮苗培养等不同培养基试验,分别筛选出贵州地宝兰最适合各阶段成长的培养基。[结果]适宜贵州地宝兰种子萌发的培养基为:1.0 g/L Hyponex1+1.0 g/L Hyponex2+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L ZT+100.0 mg/L CM+20.0 g/L蔗糖+1.0 g/L AC。适宜原球茎的增殖培养基为:B5+0.5 mg/L NAA+100.0 g/L马铃薯+30.0 g/L蔗糖。适宜诱导根状茎分化培养基为:B5+0.5 mg/L NAA+1.0 mg/L 6-BA+100.0 g/L香蕉汁+25.0 g/L蔗糖+1.0 g/L AC。适宜生根壮苗培养基为:B5+1.0 mg/L NAA+0.5 mg/L 6-BA+100.0 g/L香蕉汁+25.0 g/L蔗糖+1.5 g/L AC,pH 5.4~5.8。[结论]该研究为珍稀濒危贵州地宝兰野生种群恢复种植试验提供了重要的种苗资源,也为今后该快速繁育技术提供了参考数据。     

植物生长调节物质及有机添加物对春兰根状茎增殖与分化的影响

以春兰‘宋梅’为试验材料,研究了植物生长调节物质及有机添加物对春兰根状茎的增殖与分化的影响,结果表明适合春兰根状茎增殖的培养基为:1/2MS+3~5 mg/L NAA+0.1 mg/L BA+10%椰子汁+30 g/L蔗糖+6.8 g/L琼脂;最适合根状茎芽分化的培养基为:1/2MS+0.5 mg/L NAA+3 mg/L BA+10%椰子汁+30 g/L蔗糖+6.8 g/L琼脂。     

影响蕙兰‘大一品’根状茎芽分化的因素研究

为了解决蕙兰组织培养过程中分化速度慢的问题,以蕙兰名品‘大一品’自交种的根状茎为材料,系统研究基本培养基、植物生长调节剂、有机附加物、P/N比、碳源、蔗糖浓度6个因素对根状茎芽分化的影响。结果表明：MS培养基为蕙兰‘大一品’根状茎芽分化的最佳培养基;植物生长调节剂浓度配比对芽分化率影响显著,在含NAA 0.3 mg/L+ 6-BA 2.0 mg/L的培养基上芽分化率最高;有机附加物对根状茎芽诱导和分化有促进作用,添加100 g/L香蕉泥能显著提高根状茎芽诱导率和分化率;减少培养基中N的含量(1/10N),增加P含量(5P),可以提高芽诱导率和分化率;麦芽糖为最适合芽诱导和分化的碳源;20 g/L蔗糖对芽分化有显著的促进作用。     

优质魔芋组培快繁技术研究*

 以魔芋的根状茎为外植体,用正交试验法研究了不同氮素含量的基本培养基、不同浓度的BA以及NAA对魔芋根状茎愈伤组织诱导的影响;不同激素组合对不定芽分化、组培苗生根诱导的影响,并针对魔芋组织培养中的褐变现象采取了有效措施。结果表明:诱导魔芋根状茎愈伤组织产生的最适培养基为NN基本培养基+1.0mg/L BA+1.0mg/L NAA;MS基本培养基+2.0mg/L BA+1.0mg/L IAA为不定芽分化的最适培养基,在不定芽诱导和生长上,BA与IAA的组合较与NAA的组合好;MS+0.5mg/L IBA+0.5mg/L GA3为组培苗的最佳生根培养基,生根率达100%;一定浓度的PVP,Vc或者AC能有效控制褐变现象的发生。     

莲瓣兰“滇梅”根状茎的增殖与分化技术研究

[目的]研究莲瓣兰"滇梅"(Cymbidium tortisepalum‘Dian Mei’)根状茎的增殖与分化技术,为提升莲瓣兰的苗体质量和大规模化产业化生产提供良好的理论依据和技术支撑。[方法]以莲瓣兰"滇梅"根状茎为试验材料,研究不同植物生长调节剂6-BA、CPPU、TDZ和活性炭对"滇梅"根状茎增殖和分化的影响。[结果]选用1/2MS培养基为基本培养基,"滇梅"根状茎增殖的最佳配方为2.0 mg/L TDZ+0.3 mg/L NAA+0.5 g/L活性炭。"滇梅"根状茎分化的最佳配方为2.0 mg/L TDZ+0.5 mg/L NAA同时培养基中不增添活性炭。添加活性炭对于"滇梅"根状茎的分化有抑制作用。[结论]TDZ作为一种高效植物生长调节剂对于莲瓣兰"滇梅"根状茎的增殖分化有显著的效果,明显优于其他植物生长调节剂。     

大花蕙兰与朱砂兰杂种根状茎增殖和分化的研究

以大花蕙兰与朱砂兰杂交种子萌发后形成的根状茎为试验材料,采用KT、6-BA和NAA三种外源激素对杂交兰根状茎进行实验,比较不同激素对根状茎增殖和分化的影响。单因素实验中,随着激素KT、6-BA浓度的增加,杂交兰根状茎的增殖率和分化率逐渐增加,但不成正比例关系。NAA浓度一定时,6-BA浓度为3 mg/L时,杂交兰根状茎的平均增殖率最高达到290%,6-BA浓度为4 mg/L时,根状茎的平均分化率最高达到85.64%;KT浓度为2.5 mg/L时,平均增殖率最高为300%;KT浓度为3.0 mg/L时,根状茎的平均分化率最高为87.89%。三种激素复合添加对杂交兰根状茎增殖和分化效果最佳。增殖效果最佳的培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+KT 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+琼脂粉7.0 g/L+香蕉80 g/L+蔗糖30 g/L+活性炭1 g/L,根状茎粗壮且长,增殖率高。分化效果最佳培养基为1/2 MS+6-BA 4.0 mg/L+KT 2.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L+琼脂粉7.0 g/L+香蕉80 g/L+蔗糖30 g/L+活性炭1 g/L,分化苗生长良好,叶色深绿。本研究为杂交优株实现工厂化育苗奠定了一定的理论基础。     

蕙兰杂交种子的无菌萌发和快速繁殖研究

实验采用蕙兰传统品种''崔梅''与普通蕙兰进行杂交,对不同发育阶段的种子进行无菌萌发实验,并作不同培养基的对照.对萌发原球茎的增殖及分化进行研究.探讨不同培养基、6-BA和NAA对根状茎增殖和分化的影响.结果表明:110天的种子接种在KC培养基上萌发效果最佳,蕙兰原球茎增殖的最佳培养基为、W+NAA0.5mg/L+6-BA1.0mg/L,根状茎分化和生根的最佳培养基为MS+NAA 1.0 mg/L+6-BA0.5mg/L.     

泽泻根茎无性系建立的研究

为保存野生根茎大的泽泻种质,以根茎为材料,成功地建立起泽泻无性系。结果证明：MS＋BA0.3 mg/L＋NH4H2PO4 50 mg/L＋2,4-D 1.6～2.0 mg/L是愈伤组织诱导和继代培养的适宜培养基;MS＋NAA 0.1 mg/L＋AgNO3 0.5 mg/L＋GA3 1.0 mg/L＋BA 0.9 mg/L是愈伤组织分化培养的适宜培养基;1/2MS＋IAA 0.2 mg/L＋NAA 0.1 mg/L的液体培养基是泽泻不定芽生根培养的适宜培养基;在温室中试管苗易移栽成活,移植到材料原产地的试管苗生长旺盛,保持了根茎大的性状。     

旱半夏组织培养技术的优化研究

以旱半夏无菌苗的叶片、叶柄和块茎为外植体,在不同温度及激素组合的条件下,进行了愈伤组织诱导、芽分化和生根的研究。结果表明:愈伤组织诱导的最适温度为25℃;MS+KT 1.0 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L对块茎的愈伤诱导效果最好,诱导率达96.7%。温度对芽分化的影响不明显;最佳的芽分化培养基为MS+KT 3.0 mg/L+2,4-D 1.0 mg/L。MS+IBA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L对单芽增殖效果明显。MS+KT 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L最有利于生根。     

仙茅地下茎段组织培养研究

[目的]为仙茅的快速繁殖提供借鉴和依据。[方法]以仙茅无菌地下茎段为外植体,在蔗糖浓度为20 g/L,琼脂用量为6.5 g/L,pH值为5.8,温度为25℃的光照条件下,设3组培养基（A愈伤组织诱导培养基MS＋6-BA 0-1.0 mg/L＋NAA 0-1.0 mg/L,B丛生芽诱导培养基MS＋6-BA 0.5-1.5 mg/L＋NAA 0.2-0.8 mg/L,C生根培养基MS＋IAA 0-0.5 mg/L）进行组培试验。[结果]最适合仙茅的愈伤组织诱导培养基为MS＋6-BA 0.2-1.0 mg/L＋NAA 0.1-0.6 mg/L;丛生芽分化培养基为MS＋6-BA 0.8-1.5 mg/L＋NAA0.2-0.5 mg/L;生根培养基为MS＋IAA 0.1-0.3 mg/L。仙茅的愈伤组织诱导率为88%-93%,丛生芽诱导率为93%-96%,生根诱导率为92%-96%。[结论]该研究为仙茅地下茎段的组织培养提供了试验参考和理论依据。     

新疆雪莲芽分化过程蛋白质·可溶性糖含量及淀粉酶活性变化

[目的]研究新疆雪莲分化过程中的生理生化变化。[方法]将以雪莲无菌苗的叶片为外植体诱导的雪莲胚性愈伤组织置于MS+2 mg/L NAA+0.5 mg/L 6-BA(pH值为5.85~5.90)培养基上进行培养,对培养过程中雪莲细胞可溶性蛋白含量、可溶性糖、淀粉酶等参数进行测定分析。[结果]在新疆雪莲整个培养阶段,胚性愈伤组织中的蛋白质含量高于非胚性愈伤组织,可溶性糖保持稳定,仅在芽分化阶段有一定的上升,α-淀粉酶活性保持稳定。胚性愈伤组织中的β-淀粉酶的活性均高于非胚性愈伤组织,这说明β-淀粉酶与细胞的分化过程密切相关。β-淀粉酶在整个培养过程中呈现双峰曲线。第1个峰出现在培养的开始阶段,第2个峰出现在芽分化时期。[结论]该研究对研究新疆雪莲的高频再生具有重要的指导意义。     

关苍术组织培养的研究

为保护野生资源,实现人工栽培,以关苍术的根茎为材料,进行了愈伤组织的诱导和分化、不定芽生根、试管苗的生根继代增殖,以及试管苗的移栽和移植的研究,建立起关苍术组织培养技术.结果表明:MS+6-BA 0.3 mg/L+2,4-D1.5 mg/L+NAA0.5 mg/L是根茎愈伤组织生长培养的理想培养基;MS+6-BA 0....     

辣椒子叶和下胚轴的离体培养及高效再生体系的建立

采用 9 个辣椒品种(Capsicum annuum L.)的子叶和下胚轴,分别离体培养在附加不同激素及化合物的MB5培养基上,对苗龄、基因型、不同外植体、激素组合和 AgNO3等对外植体不定芽诱导分化和芽伸长的影响进行研究。结果表明,苗龄对外植体不定芽分化的方式有直接影响;AgNO3的加入可使芽分化率平均提高 20 %～30 %,并缩短外植体再生时间;子叶的不定芽分化率高于下胚轴;B5维生素有利于芽的生长和芽伸长率的提高。通过结果比较,筛选出了辣椒子叶和下胚轴离体再生的较好芽分化培养基为 MB5+5 mg/L、6-BA+0.5 mg/L、IAA+4 mg/L、AgNO3+30 g/L、蔗糖+5 g/L 琼脂;芽伸长培养基为 MB5+3 mg/L、6-BA+1 mg/L、IAA+2 mg/L、GA3+4 mg/L、AgNO3+30 g/L、蔗糖+5 g/L 琼脂;生根培养基为 1/2 MS+0.2 mg/L、IAA+0.1 mg/L NAA。     

甘蓝型油菜花药培养技术研究

[目的]筛选甘蓝型油菜愈伤组织的最佳分化培养基,探讨甘蓝型油菜花药培养技术。[方法]在油菜始花期,取其主茎顶端蕾盘的中圈花蕾,将花药接种于B5+2,4 D 1.0mg/L+KT 1.5mg/L的培养基进行诱导,将诱导出的愈伤组织接种于不同配方的12种培养基进行分化培养。[结果]甘蓝型油菜花药培养取花粉处于单核后期至双核初期,对应于外部特征是蕾盘中圈10～15个花蕾,所产生的愈伤组织百分率最高(16%);12种不同配方的培养基中以B5+KT 2.0mg/L+BA 2.0mg/L+IAA 0.1mg/L或MS+KT 2.0mg/L+BA 2.0mg/L+IAA 0.1mg/L培养基上分化成苗最好,分化率分别为75%和70%,将分化的小苗置于1/2MS培养基上诱导生根,可长成完整幼苗。[结论]花药培养可以加速油菜育种进程。     

玉竹初代培养最适条件的筛选

以玉竹[Polygonatum odoratum(Mill.)Druce]的叶片、茎段以及根茎作为外殖体,采用不同灭菌方式进行灭菌,在不同基本培养基上进行培养,添加不同种类生长调节剂,分析其最适的初代培养条件。结果表明,最适灭菌方法为75%乙醇处理10 s配合0.1%升汞处理7 min,其污染率为13.3%。根茎作为外殖体有较高的诱导率,达到90.0%;在培养中,最适宜初代培养的基本培养基为MS,其诱导率为86.7%;最适宜根茎分化的生长调节剂为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,其次为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA,其分化率分别为80%和62%。