应用MAP在4℃条件下保存冰冻解冻去甘油红细胞的质量变化

冰冻解冻去甘油红细胞是采用特定方法将冰冻红细胞溶解后,清除几乎所有甘油,并将红细胞悬浮于一定的氯化钠注射液中的红细胞成分[1],该血液品种为临床常用的血液成分之一,用于稀有血型患者输血、新生儿RH溶血病换血以及自体输血长期保存等。临床使用时必须提前预约,在有库存的情况下最快也需要2~3h制备。去甘油的红细胞用生理盐水悬浮保存,必须在24h内输注[1],故临     

深低温保存血液的制备及临床应用

低温生物学原理应用于血液 (红细胞 )保存 ,可大幅度延长红细胞的体外存活时间和存活率 [1]。自2 0世纪 70年代美国 Meryman教授将甘油保存的红细胞用于人体输血首获成功以来 ,冷冻血液逐渐在临床输血治疗学中得到推广。本科从 2 0 0 0年起开展了红细胞深低温保存 ,并经过临床应用 ,证实效果良好 ,现介绍如下。材料与方法1　材料1 .1　无偿献血者 ACD- B全血 2 0 0 ml。1 .2　红细胞冷冻保护剂 ( 79.2 %甘油、8.0 %葡萄糖、1 .0 %果糖、0 .3% EDTANa2 )、专用三联袋、洗涤用 9%氯化钠溶液由北京血液中心提供 ,羟乙基淀粉溶液和 0 .9%氯…     

RhD(-)血液分离设备改进的效果观察

RhD(-)血液常以甘油作为保护剂对红细胞进行低温冰冻保存,临床使用前必须解冻去除甘油,使洗涤后红细胞悬液中甘油残留量含量<10g/L[1],因此解冻后的洗涤过程的操作至关重要。我们在制备解冻红细胞的过程中使用改良设备,取得了满意的效果。1材料与方法1.1材料设备组和改良组各20     

四氢嘧啶对人冰冻红细胞质量影响的初步研究

目的通过在红细胞深低温冰冻的冻存液中添加渗透压调节物-四氢嘧啶(ectoine),检测红细胞冰冻前后的质量,探讨ectoine用于深低温冰冻红细胞的可能性,为ectoine可用于红细胞深低温冰冻的研究提供实验依据。方法取悬浮红细胞样品8袋,每袋分为对照组(复方甘油组、甘油组)和实验组(1.5%ectoine甘油组、3%ectoine甘油组和4.5%ectoine甘油组)共5组。实验组:ectoine起始浓度为1.5%、3%与4.5%(W/V)(加红细胞后终浓度为1.05%、2.10%与3.15%)。将5组(2组对照组与3组实验组)冻存液分别加入红细胞,红细胞冰冻后解冻并洗涤。测定冰冻前(未加冻存液)及解冻洗涤后红细胞数、血红蛋白量、红细胞变形性、渗透脆性,并用电镜扫描,观察红细胞显微形态。结果与2组对照组相比,3%ectoine甘油组红细胞回收率最高(89.26±2.60)%(P0.05);3%ectoine甘油组解冻洗涤的红细胞与冰冻前红细胞,在50~(-1)、100~(-1)、200~(-1)和1 000~(-1)的剪切率值上相比P0.05,差异无统计学意义;1.5%ectoine甘油组解冻洗涤的红细胞,50%溶血率时氯化钠浓度为(4.57±0.08)g/L,3%ectoine甘油组(4.80±0.17)g/L,2组分别与复方甘油组(4.98±0.26)g/L相比P0.05,差异具有统计学意义;电镜扫描显示3组实验组红细胞与复方甘油组红细胞解冻洗涤后,均无棘状和球形红细胞,甘油组可见破膜、皱缩的红细胞。结论3%Ectoine作为渗透压调节物用于冰冻红细胞,可用于高浓度甘油冰冻红细胞时作为渗透压调节物,相对于3%乳酸钠的复方甘油(商品化复方甘油),可提高解冻洗涤的红细胞回收率,改善解冻洗涤的红细胞质量,具有在深低温冰冻红细胞的潜力。     

全自动血液处理机洗涤低温保存1年的红细胞的质量跟踪

目的 观察经Haemontics 215型全自动机器洗涤低温保存1年的红细胞在冰冻、融化、洗涤后的各项质控指标，以评价全自动血液处理机在红细胞保存、洗涤中的作用以及红细胞较长时间低温保存的可行性。方 法取6例保养液为输血用复方枸橼酸钠注射液（ACD-B）的全血，于采血后6d内离心压去血浆制成浓缩红细胞，用215型血液处理机滴入低温保护剂，于室温静置20～30min后轻离心压去上清多余甘油后快速冰冻，再移入65℃冰箱冰冻保存。1年后取出融化，使用Haemontics215型全自动血液处理机进行梯度洗涤。于融化后以及洗涤后分别取样浏定有关质控指标，并于3、6、12、24、48和72h测定游离血红蛋白值和体外溶血值。结果 使用Haemonfics215型全自动血液处理机洗涤低温保存1年的红细胞，其各项指标直至72h全部符合国家规定，无菌实验为阴性。结论 使用Haemontlcs215型全自动血液处理机器保存、洗涤红细胞的效果好、保存时间长，洗涤时间短，完全可以在日常工作中使用。     

MAP保存液对冻融红细胞的保护作用

低温生物学原理应用于血液(红细胞)保存,可大幅度延长红细胞体外存活时间和存活率。用甘油作为低温保护剂冰冻保存红细胞可以追溯到1950年,自20世纪70年代Meryman将甘油保存红细胞用于人体输血首获成功以来,冷冻血液逐渐在临床输血治疗学中得到推广。由于甘油保存及洗涤过程中会导致溶血,保存过程中也会发生溶血。本血液中心研究改进了冰冻解冻红细胞制备技术,同时对不同红细胞悬液保存红细胞的质量进行初步比较,现报告如下。     

2组洗涤溶液制备冰冻解冻去甘油红细胞的效果比较

目的观察2组洗涤溶液制备冰冻解冻去甘油红细胞的结果,比较洗涤溶液组合中是否加入羟乙基淀粉20氯化钠溶液对洗涤结果的影响。方法取44份全血,应用ACP215血液处理仪制备成冰冻红细胞,分A组:9%NaCl溶液、羟乙基淀粉20氯化钠注射液、0.9%NaCl溶液;B组:9%NaCl溶液、0.9%NaCl溶液2种洗涤溶液进行解冻去甘油。对2组红细胞回收率、残留白细胞、残留血小板、甘油含量、游离血红蛋白含量、体外溶血等指标进行检测分析。结果 A组解冻红细胞的红细胞回收率(86.0±3.4)%、残留白细胞(0.57±0.18)%、残留血小板0、甘油含量(3.4±0.8)g/L、游离血红蛋白含量(0.55±0.14)g/L、体外溶血试验(12±5)%均符合国家标准,B组红细胞回收率(87.0±2.3)%、残留白细胞(0.51±0.24)%、残留血小板0、甘油含量(3.5±0.7)g/L、游离血红蛋白含量(0.47±0.10)g/L、体外溶血试验(10±4)%也符合国家标准,2组解冻红细胞制品也均符合AABB标准和欧洲标准中对于红细胞回收率的要求,2组结果差异无统计学意义,P>0.05。结论羟乙基淀粉20氯化钠注射液对使用ACP215血液处理仪制备冰冻解冻去甘油红细胞的洗涤效果无影响,但洗涤液中不加入羟乙基淀粉20氯化钠溶液,其制品质量符合国家标准、AABB标准和欧洲标准,更加经济、省时。     

两种血液冷冻保存方法的效果比较

目的观察慢速冷冻盐液聚集洗涤法和快速冷冻法制备冰冻、解冻红细胞在冰冻、融化、洗涤后的质控指标,比较两种方法保存红细胞的差异。方法各取12例保养液为输血用复方枸橼酸钠注射液(ACD-B)的全血,于采血后6d内离心制成浓缩红细胞,使用ACP215型全自动密闭血液处理机,采用慢速冷冻盐液聚集洗涤法和快速冷冻法保存、洗涤红细胞,于融化后即刻、洗涤后即刻以及洗涤后24h分别取样测定红细胞回收率、游离血红蛋白、体外溶血及甘油含量。结果使用快速冷冻法保存、洗涤的红细胞,其红细胞回收率为(89.28±4.92)%,高于慢速冷冻盐液聚集洗涤法红细胞回收率(81.32±3.52)%;体外溶血超标,其他指标差别无显著性。结论使用快速冷冻法保存、洗涤红细胞的红细胞回收率较高,但水浴温度需要控制,且其制剂目前无法提供,应借鉴其方法对慢速冷冻盐液聚集洗涤法进行技术改进。     

一种新型国产红细胞洗涤仪洗涤效果的初步探讨

冰冻条件下保存红细胞可达到长期贮存的目的,国家规定冰冻(-80℃)红细胞的有效保存时间为10年.目前冰冻红细胞主要用于稀有血型血液,如RhD(一)血液的保存.由于冰冻红细胞在临床输注前必须经过洗涤去甘油后才能应用,现国内相当一部分血站仍采用手工方法洗涤冰冻红细胞.这种洗涤方法尽管费用低,但过程烦琐、费时、红细胞容易被污染,而使用进口设备自动洗涤则由于费用高,增加了怂患者医疗成本而受到一定的限制.     

多联袋手工法快速制备冰冻去甘油红细胞的应用

正冰冻红细胞在国内外已普遍投入临床使用,为稀有血型患者输血提供了方便,争取了抢救时间,冰冻红细胞还可用于特殊患者的自身输血和部分调节血液供求不平衡现象,冰冻血是其他制剂所不能代替的血液制品~([1])。冰冻红细胞使用前要进行解冻去甘油,一种简便、快速、质量稳定的解冻去甘油方法是保证患者输血及时有效的关键,现将一种手工快速制备冰冻解冻去甘油红细胞的方法及质量检测结果报告如下。     

Rh(D)阴性冰冻解冻红细胞的制备及临床应用

目的探讨Rh(D)阴性冰冻解冻红细胞的制备方法,并对临床输注效果进行分析。方法采用57%甘油作为冰冻保护剂,用9%NaCl、羟乙基淀粉40氯化钠注射液、0.9%NaCl洗涤制备冰冻解冻红细胞,按国家卫生部规定的检测方法对该制品进行质控,并对临床输注效果进行跟踪观察。结果Rh(D)阴性冰冻红细胞解冻后,各项质控指标符合国家标准,经临床输注后效果良好。结论该方法适用于临床上稀有血型患者的输血需要。     

冰冻红细胞制备过程中若干问题探讨

目的　为简化冰冻红细胞的制备程序 ,保证临床及时用血。方法　比较不同条件制备的成品冰冻红细胞的红细胞回收率、溶血率、上清游离血红蛋白及体外溶血试验。结果　红细胞冰冻前在 4℃贮存 1～ 6d与 7～1 2d、甘油化红细胞先冰冻待解冻后再去甘油与先去甘油再冰冻、洗涤时加不同量的 9%氯化钠溶液所制备的成品冰冻红细胞的红细胞回收率、溶血率、上清游离血红蛋白及体外溶血试验均无显著性差异 ,缓慢匀速加甘油与快速加甘油中间静置平衡使红细胞甘油化后甘油中血红蛋白含量有显著性差异 ,前者高于后者。结论　上述条件的改变可简化冰冻红细胞的制备程序且不影响冰冻红细胞的质量     

深低温长期保存方法延缓红细胞衰老的研究

目的 探讨红细胞在深低温(-70±5)℃下保存对延缓红细胞老化的影响.方法 采用ACD-B抗凝全血制备浓缩红细胞,加入冰冻保护剂于(-70土5)℃保存12年.快速解冻后,用Haemontics215型全自动血液处理机洗涤去甘油.洗涤后制备成红细胞悬液,检测红细胞表面CD47、磷脂酰丝氨酸(PS)含量和红细胞表面抗原,并在扫描电镜下观测红细胞形态.结果 各项指标显示,红细胞保存效果良好,深低温保存可延缓红细胞的衰老速率.结论 用含甘油的冰冻保护剂深低温长期保存红细胞是一种安全、有效的方法.     

甘油化震荡频率对冰冻解冻去甘油红细胞质量的影响

目的对本站制备冰冻解冻去甘油红细胞的方法进行探索并对其质量进行评价。方法随机抽取本站40 U相似文献   

采用ACP215洗涤机制备解冻去甘油红细胞的质量观察

目的运用ACP215全自动细胞处理系统仪器洗涤,对该仪器的去甘油解冻红细胞程序中主要参数的设定和应用,观察手工法与机器法洗涤红细胞的血液质量是否存在差异。方法在甘油化红细胞、解冻融化的操作步骤一致的情况下,运用手工法与全自动仪器法,通过盐水梯度洗涤使冰冻解冻的甘油化红细胞逐渐降低渗透液浓度的方法去除甘油。结果ACP215全自动细胞处理系统仪器洗涤的冰冻解冻去甘油红细胞,红细胞回收率（85．0&#177;5．06）％、残余白细胞（0．65&#177;0．91）％、残余血小板（0．27&#177;0．27）％、甘油残余量（1．73&#177;1．66）g／L、游离血红蛋白（0．36&#177;0．20）g／L、体外溶血率（16．39&#177;14．27）％,符合国标要求。结论机洗红细胞的回收率优于手工洗涤法,但机洗的游离血红蛋白略高于手工洗涤。     

深低温长期保存红细胞的效果评价

目的 对红细胞在深低温(-70±5)℃下保存12年的效果进行评价.方法 采用ACD-B抗凝全血制备浓缩红细胞,加入冰冻保护剂于(-70±5)℃保存12年.快速解冻后,用Haemonetics215型全自动血液处理机洗涤去甘油.洗涤后制备成红细胞悬液,检测其中的红细胞回收率、残余白细胞、残余血小板、甘油残留含量、游离血红蛋白含量,并进行ATP、2,3-DPG的检测.结果 红细胞在深低温保存12年复苏去甘油后除红细胞回收率(71.40％)略低外,其它各项指标均符合中华人民共和国国家标准.深低温保存12年后的红细胞与新鲜红细胞相比,2,3-DPG含量没有显著性差异,ATP含量下降为新鲜红细胞67.2％.结论 用含甘油的冰冻保护剂深低温长期保存红细胞是一种安全、有效的方法.     

2种滤除白细胞方法及冰冻前4℃、不同保存时间对制备冰冻红细胞质量的影响

冰冻红细胞主要用于稀有血型和自身输血的贮存,其优点是可延长红细胞保存时间达10年,减少了Rh(D)阴性血液宝贵资源的浪费.我国<全血及成分血质量要求>~([1])规定冰冻解冻去甘油红细胞应由保存时间在<6 d的全血、浓缩红细胞、悬浮红细胞血液制剂中的红细胞分离制备.     

细胞洗涤机自动洗涤解冻红细胞的探讨

目前最常见的红细胞冰冻保存的保护剂为甘油 ,临床应用前须经一定的程序洗涤才能去除。国内大多采用手工洗涤的方法 ,但其操作不够简便 ,所需时间长。本实验室采用 Haemonetics公司的 1 1 5型细胞洗涤机进行洗涤 ,并对仪器的参数进行了优化 ,取得了较好的效果。现将结果报告如下。材料与方法1　主要试剂与材料　甘油 (兰溪市化工试剂厂 ,分析纯 ) ;冰冻血袋和 5 .0 4 mmol/L高盐 Na Cl溶液由北京博桑特输采血器材开发中心提供 ;羟乙基淀粉溶液由江苏常熟制药厂提供 ;0 .5 0 4 mmol/L生理盐水由上海血液中心提供。细胞洗涤一次性耗材由Hae…     

深低温保存Rh阴性血液的质量控制

目的　确保深低温保存Rh阴性红细胞解冻后的质量。方法取ACD抗凝 ,4℃保存 6d内Rh阴性红细胞悬液或全血离心除去添加剂或血浆的浓缩红细胞 ,将红细胞经 (4 0 % )浓度甘油处理后 ,置 - 80℃冰冻保存。临床需要时 37℃水浴解冻复苏红细胞 ,依次用 9%NaCl羟乙基淀粉溶液 ,0 .9%NaCl羟乙基淀粉溶液 ,0 .9%NaCl各洗涤 1次。用生理盐水羟乙基淀粉溶液悬浮红细胞。结果 35袋冰冻解冻红细胞去甘油后红细胞回收率为(81 .1 7± 1 8.5 ) % ,游离血红蛋白为 (0 .6 3± 0 .1 6 ) g/L ,甘油残留量平均为 5 .3g/L ,体外溶血试验血红蛋白增加率为2 5 .1 9%。结论冰冻解冻去甘油红细胞各项指标均达到了国家规定的质量标准 ,临床输用效果良好     

冰冻-解冻-去甘油过程红细胞形态变化与损伤相关性的探讨

目的探讨冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞形态变化与其损伤的相关性。方法依据配对设计原理,采用冻存前保留红细胞外多余甘油溶液(方法1)和冻存前离心去除红细胞外多余甘油溶液(方法2)的两种常规方法,制备冰冻解冻去甘油红细胞,对冰冻-解冻-去甘油过程各关键制备节点留取的样本,进行血常规及上清游离血红蛋白(FHb)含量的检测,分析红细胞形态变化及其与损伤的关联。结果 (1)冰冻-解冻-去甘油过程红细胞因甘油化而体积增大,后因去甘油化而复原,方法2较之方法1甘油化红细胞(冻存前)和冰冻解冻去甘油红细胞的平均体积(MCV)增高(P0.01,P0.05);(2)冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞损伤分布依次为:去甘油化过程(63.20±10.99)%、甘油化过程(30.78±10.47)%、冰冻解冻过程(6.02±4.11)%,两种制备方法间差异无统计学意义;(3)红细胞破坏与甘油化过程红细胞体积变化率呈中度负相关;(4)随着贮存时间的延长,冰冻解冻去甘油红细胞上清游离血红蛋白含量逐渐增加,0.9%氯化钠悬浮冰冻解冻去甘油红细胞储存12 h、24 h,MAP悬浮冰冻解冻去甘油红细胞储存21 d、28 d,两种制备方法间差异有统计学意义(P0.05)。结论冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞损伤与其变形能力呈负相关,且损伤主要发生在去甘油化过程,冻存前离心去除红细胞外多余甘油溶液导致红细胞膜骨架因剪切力作用而受损,进而对冰冻解冻去甘油红细胞贮存质量产生不利影响。